Hoja de repaso: Communication cellulaire végétale et division

📋 Plan du Cours

1. Communication cellulaire par les plasmodesmes et réseau symplasmique
2. Différences entre jonctions intercellulaires animales et végétales
3. Polarisation cellulaire et rôle de l’auxine dans l’embryogenèse végétale
4. Fonction du facteur GNOM dans le transport polaire de l’auxine et morphogenèse
5. Particularités de la division cellulaire végétale liées au cytosquelette
6. Fonction du phragmoplaste dans la formation de la paroi des cellules filles
7. Impact de la division cellulaire sur la morphogenèse et la topologie tissulaire végétale
8. Comparaison entre cytokinèse animale et végétale
9. Processus et types de polyploïdisation chez les plantes
10. Mécanismes d’endopolyploïdisation : endomitose, endoréplication et caryocinèse

📖 1. Communication cellulaire par les plasmodesmes et réseau symplasmique

🔑 Notions clés & Définitions

• Plant Signalling and Behaviour : 2014.

📝 Points essentiels

• Les plasmodesmes forment un réseau symplasmique continu permettant le transit de métabolites, ions (calcium, magnésium), hormones, messagers secondaires, ARN, peptides, etc.
• La diffusion à travers les plasmodesmes est limitée par une taille d'exclusion moyenne de 800-1200 Da.
• L'ouverture et la fermeture des plasmodesmes peuvent être régulées par la synthèse de callose en réponse à des conditions physiologiques ou environnementales, comme une attaque de pathogènes.

💡 À retenir

Les plasmodesmes et le réseau symplasmique assurent une communication cellulaire sélective et régulée chez les plantes, contrôlant le transit de molécules en fonction des besoins physiologiques et environnementaux.

📖 2. Différences entre jonctions intercellulaires animales et végétales

🔑 Notions clés & Définitions

📝 Points essentiels

• Les plasmodesmes, canaux actifs et sélectifs, sont spécifiques aux cellules végétales et permettent le passage limité de molécules selon une taille d’exclusion moyenne de 800-1200 Da.
• Les jonctions intercellulaires animales et végétales diffèrent structurellement et fonctionnellement, adaptées à leurs contextes cellulaires respectifs.

💡 À retenir

Les jonctions intercellulaires des cellules animales et végétales présentent des différences fondamentales liées à leur structure et fonction, reflétant leurs adaptations spécifiques, notamment l’intégration de la paroi rigide chez les végétaux et la diversité des jonctions chez les animaux.

📖 3. Polarisation cellulaire et rôle de l’auxine dans l’embryogenèse végétale

🔑 Notions clés & Définitions

• Auxine : Distribution asymétrique d’auxine le long de l’axe apical-basal au cours de l’embryogenèse, essentielle pour la formation des axes embryonnaires et visualisable avec des rapporteurs comme DR5::GFP.

📝 Points essentiels

• L’auxine est une hormone végétale dont le transport polaire est crucial pour la polarisation cellulaire durant l’embryogenèse.
• Les transporteurs PIN et AUX régulent l’orientation des flux d’auxine, établissant un gradient apical-basal.
• La polarisation cellulaire oriente les flux d’auxine, ce qui est crucial pour la formation des axes embryonnaires et la différenciation cellulaire.
• La visualisation du gradient d’auxine peut être réalisée avec des rapporteurs comme DR5::GFP.

💡 À retenir

La polarisation cellulaire orchestrée par l’auxine guide la formation des axes et la différenciation embryonnaire chez les plantes.

📖 4. Fonction du facteur GNOM dans le transport polaire de l’auxine et morphogenèse

🔑 Notions clés & Définitions

• Auxine : Hormone végétale dont le transport orienté est essentiel pour la formation de gradients nécessaires à la morphogenèse embryonnaire.

📝 Points essentiels

• Le mutant gnom présente des défauts de morphogenèse embryonnaire dus à une perturbation du transport polaire de l’auxine.
• La mise en place de gradients d’auxine via GNOM est indispensable pour la construction des axes embryonnaires et la morphogenèse.

💡 À retenir

Comprendre le rôle clé de GNOM dans la régulation du transport polaire de l’auxine et son impact sur la morphogenèse embryonnaire.

📖 5. Particularités de la division cellulaire végétale liées au cytosquelette

🔑 Notions clés & Définitions

• GNOM : 2003) Apex Base 14 Hy = hypophyse S
• Anneau de Préprophase (PPB) : Anneau de microtubules apparaissant en fin de phase G2 avant la prophase, spécifique aux mitoses des plantes terrestres, marquant l’emplacement du futur plan de division et de la future paroi cellulaire.
• Particularités liées au cytosquelette : Le cytosquelette végétal, comprenant microtubules et filaments d’actine, joue un rôle central dans la division cellulaire végétale, notamment dans l’orientation du plan de division.
• Division Particularités des divisions chez : Les divisions cellulaires chez les plantes terrestres se distinguent par la présence de l’anneau de préprophase et du phragmoplaste, en raison de la paroi pecto-cellulosique et des particularités du cytosquelette.
• Paroi pecto-cellulosique 2 Particularités liées : La paroi pecto-cellulosique impose des particularités dans la division cellulaire végétale, notamment la formation du phragmoplaste pour la séparation des cellules.

📝 Points essentiels

• L’anneau de préprophase marque l’emplacement du futur plan de division et de la future paroi cellulaire chez les plantes terrestres.
• Le PPB apparaît en fin de phase G2 avant la prophase, spécifique aux mitoses des plantes terrestres, et est absent lors de la méiose et des mitoses gamétophytiques.
• Le cytosquelette végétal, incluant microtubules et filaments d’actine, est essentiel pour l’orientation du plan de division.

💡 À retenir

Les structures cytosquelettiques spécifiques, notamment l’anneau de préprophase et le phragmoplaste, déterminent le plan de division chez les cellules végétales.

📖 6. Fonction du phragmoplaste dans la formation de la paroi des cellules filles

🔑 Notions clés & Définitions

• Phragmoplaste : Structure spécifique des cellules végétales formée d’un réseau de microtubules, filaments d’actine et vésicules, apparaissant en début de télophase et essentielle pour organiser la formation de la nouvelle paroi cellulaire entre les deux cellules filles.

📝 Points essentiels

• Cette structure est essentielle pour reconstituer la paroi pecto-cellulosique après la division cellulaire.
• Le phragmoplaste est une structure spécifique des cellules végétales formée d’un réseau de microtubules, filaments d’actine et vésicules, apparaissant en début de télophase.

💡 À retenir

Le phragmoplaste orchestre la construction de la paroi cellulaire lors de la cytokinèse végétale en organisant les composants nécessaires à la formation de la nouvelle paroi entre les cellules filles.

📖 7. Impact de la division cellulaire sur la morphogenèse et la topologie tissulaire végétale

🔑 Notions clés & Définitions

• Division cellulaire et morphogenèse : Interaction entre le processus de division d'une cellule en deux cellules filles et le développement de la forme et de la structure des tissus végétaux, particulièrement en l'absence de migration cellulaire.
• **Cellulaire et morphogenèse
• En absence** : Condition dans laquelle les cellules ne migrent pas, ce qui fait que la division cellulaire, en présence d'une paroi rigide, contrôle la forme, la position des cellules filles et la topologie des tissus.

📝 Points essentiels

• L’anneau de préprophase et le phragmoplaste sont cruciaux pour déterminer le plan de division, influençant la topologie des tissus.
• La morphogenèse végétale dépend fortement de la régulation spatiale de la division cellulaire.

💡 À retenir

La division cellulaire, en l’absence de migration cellulaire, détermine la structure et l’organisation des tissus végétaux en contrôlant spatialement le plan de division grâce à l’anneau de préprophase et au phragmoplaste.

📖 8. Comparaison entre cytokinèse animale et végétale

🔑 Notions clés & Définitions

• Cytokinèse animale : Mécanisme de division cellulaire chez les animaux caractérisé par la formation d’un anneau contractile composé de microfilaments d’actine et de myosine, qui se contracte pour étrangler la cellule mère en deux cellules filles.
• Tetraploid : Type de cellule ou organisme possédant quatre jeux complets de chromosomes, soit 4N, résultant d’un processus d’augmentation de la quantité d’ADN appelé polyploïdisation.
• Octoploid : Type de cellule ou organisme possédant huit jeux complets de chromosomes, soit 8N, issu d’un processus d’augmentation de la quantité d’ADN tel que la polyploïdisation.

📝 Points essentiels

• La cytokinèse animale implique la formation d’un anneau contractile de microfilaments d’actine et de myosine, conduisant à la séparation par étranglement.
• La cytokinèse végétale repose sur la formation du phragmoplaste et la construction d’une nouvelle paroi cellulaire entre cellules filles.
• Les différences reflètent l’adaptation aux structures cellulaires : absence de paroi chez les animaux, présence de paroi rigide chez les plantes.

💡 À retenir

Les mécanismes de cytokinèse chez animaux et plantes diffèrent, reflétant leurs structures cellulaires spécifiques : étranglement pour les animaux, formation du phragmoplaste pour les plantes.

📖 9. Processus et types de polyploïdisation chez les plantes

🔑 Notions clés & Définitions

• Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : Seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN.
• Exemple : Le blé tendre (Triticum aestivum) est un exemple d’organisme hexaploïde où toutes les cellules possèdent une quantité accrue d’ADN.
• Polyploïdisation constitutive : Augmentation de la quantité d’ADN dans toutes les cellules d’un organisme, comme observé chez le blé tendre hexaploïde.
• Cellule polynucléée : Cellule contenant plusieurs noyaux, pouvant résulter de mécanismes tels que la caryocinèse sans cytokinèse, comme dans l’albumen coenocytique de la noix de coco.

📝 Points essentiels

• La polyploïdisation constitutive concerne toutes les cellules d’un organisme, comme chez le blé tendre hexaploïde.
• L’endopolyploïdisation concerne 90% des angiospermes et touche certaines cellules spécifiques d’un organe ou tissu.

💡 À retenir

Les types de polyploïdisation, constitutive ou endopolyploïdique, jouent un rôle clé dans la diversité cellulaire et l’adaptation des plantes.

📖 10. Mécanismes d’endopolyploïdisation : endomitose, endoréplication et caryocinèse

🔑 Notions clés & Définitions

• Endomitose : Phase M partielle caractérisée par la séparation des chromatides sans cytokinèse, ce qui augmente le nombre de copies d’ADN dans une cellule.

📝 Points essentiels

• L’endomitose est une phase M partielle avec séparation des chromatides sans cytokinèse, augmentant le nombre de copies d’ADN dans une cellule.
• L’endoréplication est un cycle S sans phase M, conduisant à une duplication de l’ADN sans division cellulaire, produisant des chromosomes polytènes.
• La caryocinèse sans cytokinèse produit des cellules polynucléées, comme dans l’albumen coenocytique de la noix de coco.

💡 À retenir

Différents mécanismes cellulaires d’endopolyploïdisation, tels que l’endomitose, l’endoréplication et la caryocinèse sans cytokinèse, augmentent localement la quantité d’ADN dans certains tissus végétaux, influençant leur physiologie.

🧩 Compléments de couverture

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29. Détail source à réviser : -Absent lors de la méiose et les mitoses gamétophytiques microtubules ADN http://biol.unt.edu/~ajwright/The_Wright_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.jic.a (Source: "-Absent lors de la méiose et les mitoses gamétophytiques microtubules ADN http://biol.unt.edu/~ajwright/The_Wright_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-lloyd/henrik-buschmann/ 20 Formation du phragmoplaste en début de télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer")
30. Détail source à réviser : Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-lloyd/henrik-buschmann/ 20 Formation du phragmoplaste en début de télophase 21 Structure nécessaire pou (Source: "Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-lloyd/henrik-buschmann/ 20 Formation du phragmoplaste en début de télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellules filles • Structure spécifique des cellules végétales, formée d’un réseau de")
31. Détail source à réviser : https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-lloyd/henrik-buschmann/ 20 Formation du phragmoplaste en début de télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellules filles • Structure spécifique des cellule (Source: "https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-lloyd/henrik-buschmann/ 20 Formation du phragmoplaste en début de télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellules filles • Structure spécifique des cellules végétales, formée d’un réseau de MT, de filaments d’actine et de vésicules Bilan: Division cellulaire et morphogenèse • En absence de")
32. Détail source à réviser : télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellules filles • Structure spécifique des cellules végétales, formée d’un réseau de MT, de filaments d’actine et de vésicules Bilan: Division cellula (Source: "télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellules filles • Structure spécifique des cellules végétales, formée d’un réseau de MT, de filaments d’actine et de vésicules Bilan: Division cellulaire et morphogenèse • En absence de migration cellulaire et en présence de la paroi, l’anneau de préprophase et le phragmoplaste sont")
33. Détail source à réviser : des cellules végétales, formée d’un réseau de MT, de filaments d’actine et de vésicules Bilan: Division cellulaire et morphogenèse • En absence de migration cellulaire et en présence de la paroi, l’anneau de préprophase (Source: "des cellules végétales, formée d’un réseau de MT, de filaments d’actine et de vésicules Bilan: Division cellulaire et morphogenèse • En absence de migration cellulaire et en présence de la paroi, l’anneau de préprophase et le phragmoplaste sont importants pour contrôler l’emplacement du futur plan de division, donc l’emplacement et la forme des")
34. Détail source à réviser : Division cellulaire et morphogenèse • En absence de migration cellulaire et en présence de la paroi, l’anneau de préprophase et le phragmoplaste sont importants pour contrôler l’emplacement du futur plan de division, don (Source: "Division cellulaire et morphogenèse • En absence de migration cellulaire et en présence de la paroi, l’anneau de préprophase et le phragmoplaste sont importants pour contrôler l’emplacement du futur plan de division, donc l’emplacement et la forme des cellules filles et donc la topologie des tissus. 22 23 Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale")
35. Détail source à réviser : de préprophase et le phragmoplaste sont importants pour contrôler l’emplacement du futur plan de division, donc l’emplacement et la forme des cellules filles et donc la topologie des tissus. 22 23 Comparaison de la CYTOK (Source: "de préprophase et le phragmoplaste sont importants pour contrôler l’emplacement du futur plan de division, donc l’emplacement et la forme des cellules filles et donc la topologie des tissus. 22 23 Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale Variations du cycle WT 24 ➢ Processus de polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité")
36. Détail source à réviser : de division, donc l’emplacement et la forme des cellules filles et donc la topologie des tissus. 22 23 Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale Variations du cycle WT 24 ➢ Processus de polyploïdisation = processu (Source: "de division, donc l’emplacement et la forme des cellules filles et donc la topologie des tissus. 22 23 Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale Variations du cycle WT 24 ➢ Processus de polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule. 2 types: 1 – Polyploïdisation constitutive: toutes les cellules de")
37. Détail source à réviser : Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale Variations du cycle WT 24 ➢ Processus de polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule. 2 types: 1 – Polyploïdisation constit (Source: "Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale Variations du cycle WT 24 ➢ Processus de polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule. 2 types: 1 – Polyploïdisation constitutive: toutes les cellules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN. Exemples: - Le blé tendre (Triticum aestivum) est")
38. Détail source à réviser : = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule. 2 types: 1 – Polyploïdisation constitutive: toutes les cellules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN. Exemples: - Le blé tendre (T (Source: "= processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule. 2 types: 1 – Polyploïdisation constitutive: toutes les cellules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN. Exemples: - Le blé tendre (Triticum aestivum) est hexaploïde (6N) Tetraploid 4N Triploid 3N Octoploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane")
39. Détail source à réviser : constitutive: toutes les cellules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN. Exemples: - Le blé tendre (Triticum aestivum) est hexaploïde (6N) Tetraploid 4N Triploid 3N Octoploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Po (Source: "constitutive: toutes les cellules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN. Exemples: - Le blé tendre (Triticum aestivum) est hexaploïde (6N) Tetraploid 4N Triploid 3N Octoploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cellule diploïdeD’après C. Deluche")
40. Détail source à réviser : - Le blé tendre (Triticum aestivum) est hexaploïde (6N) Tetraploid 4N Triploid 3N Octoploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cel (Source: "- Le blé tendre (Triticum aestivum) est hexaploïde (6N) Tetraploid 4N Triploid 3N Octoploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cellule diploïdeD’après C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur")
41. Détail source à réviser : 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cellule diploïdeD’après C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe (Source: "4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cellule diploïdeD’après C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN. Concerne 90% des angiospermes! Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT")
42. Détail source à réviser : Cellule diploïdeD’après C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN. Concerne 90% des angiospermes! Il existe différents cas d’endopol (Source: "Cellule diploïdeD’après C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN. Concerne 90% des angiospermes! Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En")
43. Détail source à réviser : cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN. Concerne 90% des angiospermes! Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi (Source: "cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN. Concerne 90% des angiospermes! Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans")
44. Détail source à réviser : existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polyn (Source: "existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT")
45. Détail source à réviser : d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais pas de (Source: "d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT Endomitose : Phase M partielle. Séparation des chromatides, mais absence de cytokinèse 2N/2C >>>>>> 4N/4C")
46. Détail source à réviser : d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT Endomitose : Phase M partielle. Séparation des chromatides, mais absence (Source: "d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT Endomitose : Phase M partielle. Séparation des chromatides, mais absence de cytokinèse 2N/2C >>>>>> 4N/4C WT 2-2: Endoréplication (ou endoréduplication) : Phase S mais pas de phase M (endocycle) 2N/2C < 2N/4C")
47. Détail source à réviser : sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT Endomitose : Phase M partielle. Séparation des chromatides, mais absence de cytokinèse 2N/2C >>>>>> 4N/4C WT 2-2: E (Source: "sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT Endomitose : Phase M partielle. Séparation des chromatides, mais absence de cytokinèse 2N/2C >>>>>> 4N/4C WT 2-2: Endoréplication (ou endoréduplication) : Phase S mais pas de phase M (endocycle) 2N/2C < 2N/4C Observation de chromosomes")
48. Détail source à réviser : WT 1 4 modalités de communication des signaux au niveau cellulaire Les plasmodesmes: des canaux cytoplasmiques 2 Réseau Symplasmique 3 Un réseau symplasmique sélectif • Réseau de plasmodesmes = continuums cytoplasmiques (Source: "WT 1 4 modalités de communication des signaux au niveau cellulaire Les plasmodesmes: des canaux cytoplasmiques 2 Réseau Symplasmique 3 Un réseau symplasmique sélectif • Réseau de plasmodesmes = continuums cytoplasmiques • Transit de molécules variées: métabolites, ions (calcium, magnésium), hormones, messagers secondaires, ARN, peptides, etc… • Diffusion...")
49. Détail source à réviser : agers secondaires, ARN, peptides, etc… • Diffusion limitée par la taille d’exclusion limite du plasmodesme (en moyenne 800-1200 Da) 4 Un canal actif et (Source: "agers secondaires, ARN, peptides, etc… • Diffusion limitée par la taille d’exclusion limite du plasmodesme (en moyenne 800-1200 Da) 4 Un canal actif et")
50. Détail source à réviser : 5 6 Possibilité de contrôler le flux symplasmique Callose = polymère de glucose L’ouverture et/ou la fermeture des plasmodesmes peut être régulée en fonction des conditions physiologiques et environnementales (attaque de (Source: "5 6 Possibilité de contrôler le flux symplasmique Callose = polymère de glucose L’ouverture et/ou la fermeture des plasmodesmes peut être régulée en fonction des conditions physiologiques et environnementales (attaque de pathogènes par exemple) Marzec")
51. Détail source à réviser : 7 Début de Différenciation WT 8 Jonctions intercellulaires différentes Comparaison animal/végétal D ’après Le Bail et al (Source: "7 Début de Différenciation WT 8 Jonctions intercellulaires différentes Comparaison animal/végétal D ’après Le Bail et al")
52. Détail source à réviser : 2007 Axes Principaux: Antério-postérieur Dorso-Ventraux Axe Principal: Apical-Basal 9 zygote élongation division ca cb Zygote Arabidopsis thaliana 1ère division asymétrique 10 Polarisation au cours de l’embryogenèse Un s (Source: "2007 Axes Principaux: Antério-postérieur Dorso-Ventraux Axe Principal: Apical-Basal 9 zygote élongation division ca cb Zygote Arabidopsis thaliana 1ère division asymétrique 10 Polarisation au cours de l’embryogenèse Un signal interne majeur: l’auxine La polarisation au cours de l’embryogenèse dépends de")
53. Détail source à réviser : on ca cb Zygote Arabidopsis thaliana 1ère division asymétrique 10 Polarisation au cours de l’embryogenèse Un signal interne majeur: l’auxine La (Source: "on ca cb Zygote Arabidopsis thaliana 1ère division asymétrique 10 Polarisation au cours de l’embryogenèse Un signal interne majeur: l’auxine La")
54. Détail source à réviser : ion au cours de l’embryogenèse dépends de l’orientation des flux d’auxine Auxine = hormone végétale dont le transport est orienté 11 = AIA (ou IAA) 12 (Source: "ion au cours de l’embryogenèse dépends de l’orientation des flux d’auxine Auxine = hormone végétale dont le transport est orienté 11 = AIA (ou IAA) 12")
55. Détail source à réviser : xine La polarisation cellulaire permet d’orienter les flux d’auxine L’axe apical-basal est lié à la formation d’un gradient d’auxine Visualisation d’un (Source: "xine La polarisation cellulaire permet d’orienter les flux d’auxine L’axe apical-basal est lié à la formation d’un gradient d’auxine Visualisation d’un")
56. Détail source à réviser : 13 November 2003) Apex Base 14 Hy = hypophyse S = Suspenseur WT gnom1 European Journal of Cell Biology, Volume 89, Issues 2–3, 2010, 15 Le mutant gnom affecté dans la mise en place des transporteurs d’auxine présente des (Source: "13 November 2003) Apex Base 14 Hy = hypophyse S = Suspenseur WT gnom1 European Journal of Cell Biology, Volume 89, Issues 2–3, 2010, 15 Le mutant gnom affecté dans la mise en place des transporteurs d’auxine présente des défauts de morphogenèse embryonnaire Exemple: mutant gnom")
57. Détail source à réviser : Cell Biology, Volume 89, Issues 2–3, 2010, 15 Le mutant gnom affecté dans la mise en place des transporteurs d’auxine présente des défauts de (Source: "Cell Biology, Volume 89, Issues 2–3, 2010, 15 Le mutant gnom affecté dans la mise en place des transporteurs d’auxine présente des défauts de")
58. Détail source à réviser : s d’auxine au cours de l’embryogenèse est indispensable pour la construction des axes et la morphogenèse. (Source: "s d’auxine au cours de l’embryogenèse est indispensable pour la construction des axes et la morphogenèse.")
59. Détail source à réviser : 16 1 – La division cellulaire 17 Un cycle commun à tous les eucaryotes stade quiescent de non division Particularités des divisions chez les plantes qui doit tenir compte de la paroi pecto-cellulosique 2 Particularités l (Source: "16 1 – La division cellulaire 17 Un cycle commun à tous les eucaryotes stade quiescent de non division Particularités des divisions chez les plantes qui doit tenir compte de la paroi pecto-cellulosique 2 Particularités liées au cytosquelette: 1 - L’anneau de Préprophase (PPB = Preprophase Band)")
60. Détail source à réviser : e Préprophase (PPB = Preprophase Band) 2 - Le phragmoplaste 18 1 - Anneau de Préprophase (« PreProphaseBand – PPB ») = Anneau de microtubules qui apparait en fin de phase G2 avant la prophase - Caractéristiques des mitos (Source: "e Préprophase (PPB = Preprophase Band) 2 - Le phragmoplaste 18 1 - Anneau de Préprophase (« PreProphaseBand – PPB ») = Anneau de microtubules qui apparait en fin de phase G2 avant la prophase - Caractéristiques des mitoses chez les Plantes terrestres (embryophytes) -Absent l")
61. Détail source à réviser : (embryophytes) -Absent lors de la méiose et les mitoses gamétophytiques microtubules ADN http://biol.unt.edu/~ajwright/The_Wright_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi ht (Source: "(embryophytes) -Absent lors de la méiose et les mitoses gamétophytiques microtubules ADN http://biol.unt.edu/~ajwright/The_Wright_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-ll")
62. Détail source à réviser : t_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-lloyd/henrik-buschmann/ 20 Formation du phragmoplaste en début de télophase 21 Structure nécessa (Source: "t_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.jic.ac.uk/STAFF/clive-lloyd/henrik-buschmann/ 20 Formation du phragmoplaste en début de télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellule")
63. Détail source à réviser : d’un réseau de MT, de filaments d’actine et de vésicules Bilan: Division cellulaire et morphogenèse • En absence de migration cellulaire et en présence (Source: "d’un réseau de MT, de filaments d’actine et de vésicules Bilan: Division cellulaire et morphogenèse • En absence de migration cellulaire et en présence")
64. Détail source à réviser : e la paroi, l’anneau de préprophase et le phragmoplaste sont importants pour contrôler l’emplacement du futur plan de division, donc l’emplacement et (Source: "e la paroi, l’anneau de préprophase et le phragmoplaste sont importants pour contrôler l’emplacement du futur plan de division, donc l’emplacement et")
65. Détail source à réviser : 22 23 Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale Variations du cycle WT 24 ➢ Processus de polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule (Source: "22 23 Comparaison de la CYTOKINESE animale vs végétale Variations du cycle WT 24 ➢ Processus de polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule")
66. Détail source à réviser : 2 types: 1 – Polyploïdisation constitutive: toutes les cellules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN (Source: "2 types: 1 – Polyploïdisation constitutive: toutes les cellules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN")
67. Détail source à réviser : Exemples: - Le blé tendre (Triticum aestivum) est hexaploïde (6N) Tetraploid 4N Triploid 3N Octoploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endorédupli (Source: "Exemples: - Le blé tendre (Triticum aestivum) est hexaploïde (6N) Tetraploid 4N Triploid 3N Octoploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cellule diploïdeD’après C")
68. Détail source à réviser : C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN (Source: "C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN")
69. Détail source à réviser : Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule po (Source: "Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule polynucléée Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen coenocytique (nombreux noyaux mais")
70. Détail source à réviser : Séparation des chromatides, mais absence de cytokinèse 2N/2C >>>>>> 4N/4C WT 2-2: Endoréplication (ou endoréduplication) : Phase S mais pas de phase M (endocycle) 2N/2C < 2N/4C Observation de chromosomes polytènes (Source: "Séparation des chromatides, mais absence de cytokinèse 2N/2C >>>>>> 4N/4C WT 2-2: Endoréplication (ou endoréduplication) : Phase S mais pas de phase M (endocycle) 2N/2C < 2N/4C Observation de chromosomes polytènes")
71. Détail source à réviser : C >>>>>> 4N/4C WT 2-2: Endoréplication (ou endoréduplication) : Phase S mais pas de phase M (endocycle) 2N/2C < 2N/4C Observation de chromosomes (Source: "C >>>>>> 4N/4C WT 2-2: Endoréplication (ou endoréduplication) : Phase S mais pas de phase M (endocycle) 2N/2C < 2N/4C Observation de chromosomes")
72. Détail source à réviser : ès C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN. Concerne 90% des (Source: "ès C. Deluche 2015 2 – L’endopolyploï disation : seules certaines cellules d’un organe ou d’un tissu augmentent leur quantité d’ADN. Concerne 90% des")
73. Détail source à réviser : (embryophytes) -Absent lors de la méiose et les mitoses gamétophytiques microtubules ADN http://biol. (Source: "(embryophytes) -Absent lors de la méiose et les mitoses gamétophytiques microtubules ADN http://biol.")
74. Détail source à réviser : edu/~ajwright/The_Wright_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www. (Source: "edu/~ajwright/The_Wright_Lab/ Marquage des MT 19 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.")
75. Détail source à réviser : 9 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www. (Source: "9 L’anneau de préprophase marque l’emplacement de la future paroi https://www.")
76. Détail source à réviser : électif Marzec. Plant Signalling and Behaviour, 2014. 5 6 Possibilité de contrôler le flux symplasmique Callose = polymère de glucose L’ouverture et/ou (Source: "électif Marzec. Plant Signalling and Behaviour, 2014. 5 6 Possibilité de contrôler le flux symplasmique Callose = polymère de glucose L’ouverture et/ou")
77. Détail source à réviser : apporteur DR5::GFP= accumulation d’auxine Nature 426, 147-153 (13 November 2003) Apex Base 14 Hy = hypophyse S = Suspenseur WT gnom1 European Journal (Source: "apporteur DR5::GFP= accumulation d’auxine Nature 426, 147-153 (13 November 2003) Apex Base 14 Hy = hypophyse S = Suspenseur WT gnom1 European Journal")
78. Détail source à réviser : giospermes! Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule (Source: "giospermes! Il existe différents cas d’endopolyploïdisation: WT 26Figure 15: Schéma représentant les différents types d’endopolyploïdi Cellule")
79. Détail source à réviser : et al. Journal de la Société de Biologie. 2007 Axes Principaux: Antério-postérieur Dorso-Ventraux Axe Principal: Apical-Basal 9 zygote élongation (Source: "et al. Journal de la Société de Biologie. 2007 Axes Principaux: Antério-postérieur Dorso-Ventraux Axe Principal: Apical-Basal 9 zygote élongation")
80. Détail source à réviser : e Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen (Source: "e Endomitose En Cellule diploïdeFigure 15: Schéma représentant les d Cellule polynucléée C Cas de caryocinèse sans cytokinèse: Exemple: Albumen")
81. Détail source à réviser : que (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT Endomitose : Phase M partielle. (Source: "que (nombreux noyaux mais pas de paroi )de la noix ce coco WT Endomitose : Phase M partielle.")
82. Détail source à réviser : signal interne majeur: l’auxine La polarisation cellulaire permet d’orienter les flux d’auxine Famille PIN Famille AUX 13 Un signal interne majeur: (Source: "signal interne majeur: l’auxine La polarisation cellulaire permet d’orienter les flux d’auxine Famille PIN Famille AUX 13 Un signal interne majeur:")
83. Détail source à réviser : 2 Particularités liées au cytosquelette: 1 - L’anneau de Préprophase (PPB = Preprophase Band) 2 - Le phragmoplaste 18 1 - Anneau de Préprophase (« (Source: "2 Particularités liées au cytosquelette: 1 - L’anneau de Préprophase (PPB = Preprophase Band) 2 - Le phragmoplaste 18 1 - Anneau de Préprophase («")
84. Détail source à réviser : ophaseBand – PPB ») = Anneau de microtubules qui apparait en fin de phase G2 avant la prophase - Caractéristiques des mitoses chez les Plantes (Source: "ophaseBand – PPB ») = Anneau de microtubules qui apparait en fin de phase G2 avant la prophase - Caractéristiques des mitoses chez les Plantes")
85. Détail source à réviser : e polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule. (Source: "e polyploïdisation = processus permettant d’augmenter la quantité d’ADN au sein d’une cellule.")
86. Détail source à réviser : WT 1 4 modalités de communication des signaux au niveau cellulaire Les plasmodesmes: des canaux cytoplasmiques 2 Réseau Symplasmique 3 Un réseau (Source: "WT 1 4 modalités de communication des signaux au niveau cellulaire Les plasmodesmes: des canaux cytoplasmiques 2 Réseau Symplasmique 3 Un réseau")
87. Détail source à réviser : ique sélectif • Réseau de plasmodesmes = continuums cytoplasmiques • Transit de molécules variées: métabolites, ions (calcium, magnésium), hormones, (Source: "ique sélectif • Réseau de plasmodesmes = continuums cytoplasmiques • Transit de molécules variées: métabolites, ions (calcium, magnésium), hormones,")
88. Détail source à réviser : e embryonnaire Exemple: mutant gnom • GNOM = facteur de trafic vésiculaire • Contrôle le dépôt polaire des transporteurs PIN La mise en place de (Source: "e embryonnaire Exemple: mutant gnom • GNOM = facteur de trafic vésiculaire • Contrôle le dépôt polaire des transporteurs PIN La mise en place de")
89. Détail source à réviser : Plant Signalling and Behaviour, 2014. 7 Début de Différenciation WT 8 Jonctions intercellulaires différentes Comparaison animal/végétal D ’après Le (Source: "Plant Signalling and Behaviour, 2014. 7 Début de Différenciation WT 8 Jonctions intercellulaires différentes Comparaison animal/végétal D ’après Le")
90. Détail source à réviser : a fermeture des plasmodesmes peut être régulée en fonction des conditions physiologiques et environnementales (attaque de pathogènes par exemple) Marzec. (Source: "a fermeture des plasmodesmes peut être régulée en fonction des conditions physiologiques et environnementales (attaque de pathogènes par exemple) Marzec.")
91. Détail source à réviser : n à tous les eucaryotes stade quiescent de non division Particularités des divisions chez les plantes qui doit tenir compte de la paroi (Source: "n à tous les eucaryotes stade quiescent de non division Particularités des divisions chez les plantes qui doit tenir compte de la paroi")
92. Détail source à réviser : en début de télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellules filles • Structure spécifique des cellules végétales, (Source: "en début de télophase 21 Structure nécessaire pour reconstituer la paroi des deux cellules filles • Structure spécifique des cellules végétales,")
93. Détail source à réviser : oploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cellule (Source: "oploid 8N Tetraploid 4N Octoploid 8N Potatoes Banana Sugarcane Rapeseed Strawberry Cellule polynucléée Endomitose Endoréduplication Cellule")
94. Détail source à réviser : lules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN. (Source: "lules de l'organisme possèdent une quantité accrue d’ADN.")
95. Détail source à réviser : forme des cellules filles et donc la topologie des tissus. (Source: "forme des cellules filles et donc la topologie des tissus.")
96. Le réseau symplasmique est un continuum cytoplasmique permettant le transit de molécules variées telles que métabolites, ions (calcium, magnésium), hormones, messagers secondaires, ARN, peptides. (Source: "Transit de molécules variées: métabolites, ions (calcium, magnésium), hormones, messagers secondaires, ARN, peptides, etc…")

📅 Repères chronologiques

Date	Événement
2014	Communication cellulaire
1200	Division cellulaire végétale
2003	Particularités de division végétale
2015	Polyploïdisation chez les plantes
2007	Mécanismes d’endopolyploïdisation
2010	Polarisation et auxine

📊 Tableaux de Synthèse

Comparaison jonctions animales et végétales

Caractéristiques	Végétales	Animales
Présence	Plasmodesmes	Diversité des jonctions, structurées différemment
Fonction	Transit limité de molécules, régulé par callose	Communication intercellulaire variée, adaptée à chaque type cellulaire

Processus de polyploïdisation chez les plantes

Type	Description	Exemples
Constitutive	Augmentation de l’ADN dans toutes les cellules	Hexaploïde chez le blé tendre
Endopolyploïdisation	Augmentation locale de l’ADN dans certaines cellules	Touche 90% des angiospermes, cellules spécifiques

⚠️ Pièges & Confusions Fréquentes

1. Confondre plasmodesmes et jonctions intercellulaires animales, qui ont des structures et fonctions différentes.
2. Mélanger la régulation de l’ouverture des plasmodesmes avec la régulation des jonctions animales.
3. Confondre la division cellulaire végétale avec la division animale, notamment l’absence de cytokinèse chez les plantes.
4. Oublier que le cytosquelette végétal inclut microtubules et filaments d’actine, mais leur rôle diffère selon le contexte.
5. Confondre endomitose, endoréplication et caryocinèse, qui sont des mécanismes distincts d’endopolyploïdisation.
6. Mélanger la polarisation cellulaire avec la simple orientation des flux d’auxine, sans considérer la régulation par PIN et AUX.
7. Confondre la fermeture des plasmodesmes régulée par callose avec d’autres mécanismes de régulation.

✅ Checklist Examen

1. Revoir la structure et la fonction des plasmodesmes.
2. Comparer les jonctions intercellulaires animales et végétales.
3. Étudier le rôle de l’auxine dans la polarisation et l’embryogenèse végétale.
4. Comprendre le rôle du GNOM dans le transport de l’auxine.
5. Connaître les particularités de la division cellulaire végétale.
6. Savoir comment le phragmoplaste se forme et sa fonction.
7. Différencier la cytokinèse animale et végétale.
8. Étudier les mécanismes de polyploïdisation et leur impact.
9. Maîtriser les mécanismes d’endopolyploïdisation.
10. Revoir la polarisation cellulaire et le rôle de l’auxine.
11. Se rappeler des dates clés : 2003, 2014, 2015, 2007, 2010, 1200.