Revision sheet: Techniques immunologiques en diagnostic

📋 Plan du Cours

1. Réactions d'agglutination
2. Tests de Coombs
3. Neutralisation d'activités biologiques
4. Techniques de fixation du complément
5. Techniques d'antigènes et anticorps marqués
6. Immunofluorescence
7. Techniques radio-immunologiques
8. Techniques immuno-enzymatiques
9. Techniques immuno-enzymatiques phase homogène
10. Techniques immuno-enzymatiques phase hétérogène

📖 1. Réactions d'agglutination

🔑 Notions clés & Définitions

• Agglutination : Réaction immunologique où des particules (bactéries, globules rouges, latex) s'agrègent sous l'action d'anticorps spécifiques, formant des agrégats visibles en microscopie ou à l'œil nu.
• Antigène (Ag) : Molécule ou structure reconnue par un anticorps, pouvant induire une réponse immunitaire.
• Anticorps (Ac) : Immunoglobulines produites par l'organisme en réponse à un antigène, capables de se lier spécifiquement à celui-ci.
• Test d'agglutination : Technique diagnostique utilisant la capacité des anticorps à provoquer l'agglutination d'antigènes présents dans un échantillon, permettant de détecter ou de quantifier la présence d'un antigène ou d'un anticorps.
• Agglutination directe vs indirecte : La réaction directe implique des antigènes et anticorps présents dans l'échantillon, tandis que la réaction indirecte utilise des particules (latex, globules rouges) recouvertes d'antigènes ou d'anticorps pour faciliter la détection.

📝 Points essentiels

• La réaction d'agglutination repose sur la spécificité entre un antigène et un anticorps, permettant une détection qualitative ou quantitative.
• Elle est utilisée dans de nombreux tests en microbiologie, sérologie (groupage sanguin, détection d'anticorps anti-virus, sérotypage), et diagnostic de maladies infectieuses.
• La sensibilité de la réaction dépend de la concentration en antigènes ou anticorps, ainsi que des conditions expérimentales (pH, ionicité).
• La classification de l'agglutination en "particulaire" ou "soluble" permet d'adapter la technique au type d'agent à détecter.
• La technique de Coombs (directe ou indirecte) est une forme spécifique d'agglutination utilisée pour diagnostiquer des incompatibilités sanguines.

💡 À retenir

Les réactions d'agglutination sont des outils immunologiques fondamentaux, simples et sensibles, permettant de diagnostiquer rapidement de nombreuses pathologies infectieuses ou immunitaires.

📖 2. Tests de Coombs

🔑 Notions clés & Définitions

• Test de Coombs direct : Technique permettant de détecter la présence d’anticorps ou du complément fixés directement sur la surface des globules rouges. Utilisé notamment pour diagnostiquer des anémies hémolytiques auto-immunes.
• Test de Coombs indirect : Technique visant à détecter dans le sérum la présence d’anticorps libres capables de se fixer sur des globules rouges spécifiques. Utilisé pour le dépistage de sensibilisation ou de incompatibilités transfusionnelles.
• Anticorps anti-GR : Immunoglobulines produites par l’organisme en réponse à la présence d’antigènes sur les globules rouges, pouvant entraîner leur destruction.
• Sensibilisation : Processus par lequel des anticorps se fixent sur les antigènes présents à la surface des globules rouges, pouvant conduire à une hémolyse.
• Réaction d’agglutination : Réaction immunologique où des anticorps provoquent la liaison de plusieurs antigènes, formant des amas visibles en microscopie ou à l’œil nu.
• Fixation du complément : Mécanisme par lequel le complément est activé et fixé sur la surface d’un antigène-antibody complex, entraînant la lyse cellulaire ou la phagocytose.

📝 Points essentiels

• Le test direct est utilisé pour confirmer une hémolyse auto-immune en détectant les anticorps ou le complément directement sur les globules rouges du patient.
• Le test indirect est employé pour dépister la présence d’anticorps anti-GR dans le sérum, notamment avant transfusion ou lors de la grossesse.
• La réaction d’agglutination est la base des tests de Coombs, permettant de visualiser la liaison anticorps-antigènes.
• La présence d’anticorps anti-D est essentielle dans la maladie hémolytique du nouveau-né, notamment lors de sensibilisation à l’antigène Rhésus.
• La technique utilise une antiglobuline (anticorps anti-anticorps) pour détecter les anticorps fixés sur les globules rouges dans le test direct ou dans le sérum dans le test indirect.
• La sensibilité du test dépend de la quantité d’anticorps ou de complément fixé, et il est souvent complété par d’autres techniques immunologiques.

💡 À retenir

Les tests de Coombs, directs ou indirects, sont essentiels pour diagnostiquer et surveiller les hémolyses immuno-allergiques, notamment lors de incompatibilités transfusionnelles ou de maladies auto-immunes. Leur principe repose sur la détection d’anticorps ou de complément fixés sur ou dans les globules rouges.

📖 3. Neutralisation d'activités biologiques

🔑 Notions clés & Définitions

• Neutralisation d’activités biologiques : Technique immunologique consistant à utiliser des anticorps pour inhiber ou bloquer une activité spécifique d’un agent pathogène ou d’une toxine, permettant ainsi son identification ou sa quantification.

• Activité biologique : Fonction ou effet spécifique d’un antigène ou d’un agent pathogène (ex : cytopathogénicité, enzyme sécrétée, multiplication virale) qui peut être neutralisée par des anticorps.

• Technique de fixation du complément : Méthode basée sur la capacité des complexes antigène-anticorps à activer le complément, entraînant la lyse ou la détection d’un agent, utilisée pour diagnostiquer des infections ou des maladies auto-immunes.

• Neutralisation par anticorps : Processus où un anticorps se lie à un antigène ou à une toxine, empêchant son interaction avec ses cibles biologiques, souvent utilisé en sérologie pour détecter la présence d’anticorps spécifiques.

• Réaction de déviation du complément : Technique permettant de détecter la présence d’anticorps ou d’antigènes en observant la fixation ou la consommation du complément lors de la réaction immunologique.

• Techniques de neutralisation : Méthodes utilisant des anticorps pour inhiber des activités biologiques, telles que la neutralisation virale, toxique ou enzymatique, souvent appliquées dans le diagnostic et la recherche biomédicale.

Point à retenir

La neutralisation d’activités biologiques par des anticorps est une technique essentielle pour diagnostiquer, détecter ou quantifier des agents pathogènes ou leurs toxines, en bloquant leur effet spécifique et en permettant leur identification précise.

📖 4. Techniques de fixation du complément

🔑 Notions clés & Définitions

• Réaction de fixation du complément : Technique immunologique basée sur la capacité du complément à se fixer sur un complexe antigène-anticorps, permettant de détecter la présence d’un antigène ou d’un anticorps spécifique dans un échantillon.
• Complément : Ensemble de protéines plasmatiques qui s’activent en cascade pour lyser des cellules ou favoriser l’opsonisation.
• Test de Coombs : Technique permettant de détecter la présence d’anticorps ou de complexes antigène-anticorps fixant le complément sur des globules rouges ou autres cibles.
• Fixation du complément : Processus par lequel le complément se lie à un complexe antigène-anticorps, entraînant la lyse ou la détection de la cible.
• Sérum décomplémenté : Sérum dont le complément a été inactivé, utilisé comme contrôle pour vérifier la fixation spécifique du complément.
• Réaction de déviation du complément : Technique permettant de mesurer la présence d’anticorps en observant la fixation ou la non-fixation du complément sur un antigène.

📝 Points essentiels

• La réaction de fixation du complément est utilisée pour diagnostiquer des maladies infectieuses, auto-immunes, ou pour le typage sanguin.
• La sensibilité de cette technique est élevée, permettant la détection de faibles quantités d’anticorps ou d’antigènes.
• La méthode repose sur la capacité du complément à se fixer sur un complexe antigène-anticorps, puis à provoquer la lyse d’une cellule cible (ex : hématies).
• La détection du complément fixé se fait par l’observation de la lyse cellulaire ou par l’utilisation d’anticorps anti-complément marqués.
• La technique est souvent utilisée pour la recherche d’anticorps anti-virus, notamment dans la sérologie virale (grippe, rougeole, etc.).
• La réaction de fixation du complément est un outil clé dans le diagnostic de maladies auto-immunes comme l’anémie hémolytique auto-immune.

💡 À retenir

La fixation du complément est une technique immunologique sensible permettant de détecter la présence d’anticorps ou d’antigènes spécifiques en observant la lyse cellulaire ou la fixation du complément, essentielle dans le diagnostic infectieux et auto-immunitaire.

📖 5. Techniques d'antigènes et anticorps marqués

🔑 Notions clés & Définitions

• Antigène (Ag) : Molécule capable de se lier spécifiquement à un anticorps ou à un récepteur de cellule immunitaire, souvent une protéine, glucide, lipide ou acide nucléique. Exemple : épitopes sur une bactérie ou un virus.

• Anticorps (Ac) : Immunoglobuline produite par l’organisme en réponse à un antigène, capable de reconnaître et de se lier à un épitope spécifique. Structure : deux chaînes lourdes et deux chaînes légères.

• Réaction d’agglutination : Interaction entre un anticorps et un antigène porteur d’épitopes, entraînant la formation de complexes visibles (agrégation de particules ou cellules).

• Techniques immunofluorescence : Méthodes utilisant des anticorps conjugués à un fluorochrome pour visualiser la présence d’un antigène dans une cellule ou un tissu par fluorescence sous microscope.

• Techniques radio-immunologiques : Méthodes utilisant des antigènes ou anticorps marqués par un isotope radioactif pour quantifier ou détecter des molécules spécifiques dans un échantillon.

• Techniques immuno-enzymatiques : Méthodes utilisant des enzymes couplées à des anticorps ou antigènes pour produire un signal coloré ou fluorescent, permettant la détection qualitative ou quantitative (ex : ELISA).

📝 Points essentiels

• Les techniques immunologiques exploitent la spécificité de la liaison Ag-Ac pour diagnostiquer des pathologies, faire du sérotypage ou du groupage sanguin.

• La réaction d’agglutination peut être directe ou indirecte (avec antiglobulines), utilisée notamment pour la sérologie, le groupage sanguin ou la détection d’anticorps spécifiques.

• La réaction de fixation du complément permet de détecter la présence d’anticorps ou antigènes en observant la lyse cellulaire ou la fixation du complément.

• Les techniques de détection par immunofluorescence directe ou indirecte permettent d’observer la localisation d’antigènes dans les tissus ou cellules.

• La radio-immunologie repose sur la compétition entre antigènes marqués et non marqués pour la liaison à un anticorps, permettant une grande sensibilité.

• Les techniques immuno-enzymatiques, comme ELISA, sont très utilisées en laboratoire pour leur sensibilité, leur simplicité et leur automatisation.

• La sensibilité des méthodes varie : la précipitation en milieu liquide est moins sensible que la turbidimétrie ou la fluorescence.

💡 À retenir

Les techniques d’antigènes et d’anticorps marqués exploitent la spécificité de la liaison Ag-Ac pour diagnostiquer, quantifier ou localiser des molécules dans les échantillons biologiques, offrant ainsi des outils essentiels en immunologie clinique et recherche biomédicale.

📖 6. Immunofluorescence

🔑 Notions clés & Définitions

• Immunofluorescence : Technique utilisant des anticorps marqués par des fluorochromes pour détecter des antigènes dans des cellules ou tissus sous microscope à fluorescence.
• Fluorochrome : Composé chimique capable d’absorber une lumière à une longueur d’onde spécifique et de réémettre une lumière à une autre longueur d’onde (émission). Exemples : FITC, Texas Red, DAPI.
• Immunofluorescence directe : Technique où l’anticorps est directement conjugué à un fluorochrome, permettant une détection simple et rapide.
• Immunofluorescence indirecte : Technique où un anticorps non marqué (primaire) se lie à l’antigène, puis un anticorps secondaire marqué à un fluorochrome se fixe à l’anticorps primaire, augmentant la sensibilité.
• Spectre d’absorption et d’émission : Plages de longueurs d’onde où un fluorochrome absorbe et émet la lumière, déterminant la couleur visible lors de l’observation.
• Saturation des sites : Étape préalable pour éviter les liaisons non spécifiques, en saturant les sites non ciblés avec des protéines non spécifiques (ex : BSA).

📝 Points essentiels

• La fluorescence permet de localiser précisément des antigènes dans les cellules ou tissus grâce à l’émission lumineuse après excitation par une lumière spécifique.
• La technique directe est plus simple mais moins sensible que l’indirecte, qui offre une amplification du signal par l’utilisation d’un anticorps secondaire.
• La spectroscopie de fluorescence repose sur la différence entre longueurs d’onde d’absorption et d’émission, permettant une détection spécifique.
• La technique est utilisée en diagnostic (ex : détection d’auto-anticorps, identification de pathogènes) et en recherche pour étudier la localisation cellulaire des protéines.
• La saturation des sites non spécifiques est cruciale pour éviter les faux positifs.
• La sensibilité des méthodes varie selon la technique et le fluorochrome utilisé, allant de 10^-9 à 10^-12 g.

💡 À retenir

L’immunofluorescence, par sa capacité à visualiser précisément la localisation des antigènes, est une technique essentielle en diagnostic et en recherche biomédicale, combinant spécificité immunologique et détection optique.

📖 7. Techniques radio-immunologiques

🔑 Notions clés & Définitions

• Radio-immunologie : Technique utilisant des isotopes radioactifs pour détecter ou quantifier des antigènes ou anticorps dans un échantillon biologique, par compétition ou par liaison spécifique.
• Isotope radioactif : Atome instable émettant des radiations, utilisé pour marquer des molécules (ex : 125I, 131I) afin de suivre leur comportement ou leur présence.
• Complexe Ag-Ac marqué : Assemblage d’un antigène ou anticorps couplé à un isotope radioactif, permettant la détection par mesure de radioactivité.
• Surnageant et culot : Termes désignant respectivement la phase liquide contenant les complexes ou les composants non liés, et la phase contenant les complexes ou les particules précipitées après séparation.
• Séparation des complexes : Processus visant à isoler les complexes Ag-Ac ou leur fraction libre pour quantification, par techniques comme filtration, échange d’ions ou précipitation.
• Difficulté de séparation : Problème majeur en radio-immunologie, car il faut distinguer précisément les complexes liés des molécules libres pour une mesure fiable.

📝 Points essentiels

• La radio-immunologie repose sur la compétition ou la liaison spécifique entre un antigène ou anticorps marqué et son homologue non marqué dans l’échantillon.
• La détection se fait par mesure de radioactivité, permettant une grande sensibilité (jusqu’à 0,0001 μg).
• La technique de fixation du complément est utilisée pour diagnostiquer des maladies infectieuses ou auto-immunes, en détectant la présence d’anticorps ou antigènes via la fixation du complément.
• La séparation des complexes et des molécules libres est cruciale pour l’analyse, souvent réalisée par précipitation, filtration ou échange d’ions.
• La sensibilité des méthodes radio-immunologiques permet de détecter des quantités infimes d’antigènes ou d’anticorps, essentielles en diagnostic médical.
• La compétition implique que la quantité d’un complexe formé dépend de la concentration de l’analyte dans l’échantillon, avec un signal proportionnel à la présence de l’agent recherché.

💡 À retenir

La radio-immunologie est une technique hautement sensible utilisant des isotopes radioactifs pour quantifier précisément des antigènes ou anticorps, mais elle nécessite une séparation rigoureuse des complexes pour garantir la fiabilité des résultats.

📖 8. Techniques immuno-enzymatiques

🔑 Notions clés & Définitions

• Réaction d'agglutination : Interaction entre un anticorps et un antigène porteur de plusieurs épitopes, entraînant la formation de complexes visibles par agrégation. Exemples : test de groupe sanguin, sérologie bactérienne.

• Test de Coombs : Technique permettant de détecter la présence d'anticorps ou de complément fixés sur les globules rouges. Divisé en direct (sur globules rouges in vivo) et indirect (dans le sérum).

• Neutralisation d'activités biologiques : Technique utilisant des anticorps pour inhiber ou neutraliser une activité spécifique d’un agent pathogène ou toxine, permettant de diagnostiquer ou étudier la réponse immunitaire.

• Réaction de fixation du complément : Méthode basée sur la capacité du complément à se fixer sur un complexe antigène-anticorps, utilisée pour détecter la présence d’un antigène ou anticorps spécifique dans un sérum.

• Techniques d’immunofluorescence : Méthodes utilisant des fluorochromes pour visualiser des antigènes ou anticorps sur ou dans les cellules au microscope à fluorescence, en direct ou indirect.

• Techniques immuno-enzymatiques : Méthodes utilisant des enzymes couplées à des anticorps ou antigènes pour produire un signal coloré ou fluorescent, permettant la détection ou la quantification précise d’un analyte.

📝 Points essentiels

• Les techniques immuno-enzymatiques se divisent en phases hétérogènes (séparation préalable des complexes) et homogènes (sans séparation). Exemples : ELISA sandwich (phase hétérogène), dosage de médicaments (phase homogène).

• La sensibilité de ces méthodes varie, allant de 0,0001 μg à 1 μg d’agent détecté par mL, selon la technique utilisée (agglutination, fixation du complément, immunofluorescence, radio-immunologie, enzymologie).

• La compétition et la non-compétition sont deux principes fondamentaux en immuno-analyses : la compétition implique une liaison mutuellement exclusive, tandis que la non-compétition permet la détection simultanée de plusieurs analytes.

• La réaction de fixation du complément est essentielle pour diagnostiquer des maladies infectieuses ou auto-immunes, en détectant la présence d’anticorps ou antigènes spécifiques.

• Les techniques d’immunofluorescence permettent une localisation précise des antigènes dans les tissus ou cellules, avec une visualisation directe ou indirecte.

• Les techniques radio-immunologiques exploitent la radioactivité pour quantifier des antigènes ou anticorps avec une grande sensibilité, notamment pour le dosage de médicaments ou hormones.

💡 À retenir

Les techniques immuno-enzymatiques offrent une grande sensibilité et spécificité pour le diagnostic et le suivi des pathologies infectieuses, auto-immunes et métaboliques, en combinant la spécificité des anticorps avec des signaux colorés ou fluorescents.

📖 9. Techniques immuno-enzymatiques phase homogène

🔑 Notions clés & Définitions

• Techniques immuno-enzymatiques : Méthodes utilisant des anticorps couplés à des enzymes pour détecter ou quantifier des antigènes ou anticorps dans un échantillon.
• Phase homogène : Technique où la réaction de détection se produit en suspension ou en solution, sans séparation préalable des composants, permettant une lecture directe du signal.
• Enzymes de marquage : Enzymes (ex : peroxydase, phosphatase alcaline) couplées à des anticorps ou antigènes, qui catalysent une réaction colorimétrique ou fluorescente pour signaler la présence de la cible.
• Méthodes ELISA : Techniques utilisant des anticorps ou antigènes fixés sur un support solide pour détecter la présence d’une molécule cible via une réaction enzymatique, en phase homogène ou hétérogène.
• Principe de compétition et non-compétition : Modes d’analyse où, dans la compétition, l’antigène marqué et non marqué rivalisent pour la liaison à l’anticorps, tandis que dans la non-compétition, deux anticorps distincts détectent la même cible (ex : ELISA sandwich).

📝 Points essentiels

• Les techniques immuno-enzymatiques phase homogène permettent une détection rapide et sensible sans étape de séparation, facilitant leur automatisation.
• La sensibilité dépend du choix de l’enzyme, du substrat utilisé, et de la méthode d’analyse (colorimétrique, fluorométrique, radio-isotopique).
• La méthode ELISA en phase homogène est souvent utilisée pour doser des médicaments, hormones, ou marqueurs biologiques, notamment dans le suivi thérapeutique.
• La détection repose sur la transformation d’un substrat en un produit coloré ou fluorescent par l’enzyme couplée à l’anticorps ou antigène.
• La technique de compétition est adaptée pour la détection d’antigènes en faible concentration, tandis que la non-compétition (ELISA sandwich) est privilégiée pour la quantification précise d’antigènes.

💡 À retenir

Les techniques immuno-enzymatiques phase homogène offrent une détection sensible et rapide, essentielles pour le diagnostic médical et le suivi biologique, en utilisant la réaction enzymatique pour signaler la présence de la cible sans étape de séparation.

📖 10. Techniques immuno-enzymatiques phase hétérogène

🔑 Notions clés & Définitions

• Technique immuno-enzymatique : Méthode utilisant un anticorps couplé à une enzyme pour détecter ou quantifier un antigène ou un anticorps dans un échantillon biologique. La réaction enzymatique produit un signal coloré ou fluorescent mesurable.

• Phase hétérogène : Technique où la séparation physique entre les composants libres et liés (antigène ou anticorps) est réalisée, souvent par fixation sur un support solide, permettant une lecture spécifique.

• ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) : Méthode immuno-enzymatique en phase hétérogène utilisant un anticorps ou antigène fixé sur un support, permettant la détection ou la quantification par réaction enzymatique.

• Méthodes compétitives vs non-compétitives :

  • Compétitives : l’antigène ou l’anticorps marqué et non marqué entrent en compétition pour le même site de liaison. La quantité de signal est inversement proportionnelle à la concentration d’analyte.
  • Non-compétitives (ex : ELISA sandwich) : utilisent deux anticorps distincts, la réponse est directement proportionnelle à la concentration de l’analyte.

• Support solide : Matériel (microplate, bille, membrane) sur lequel l’antigène ou l’anticorps est immobilisé pour permettre la réaction spécifique et la séparation des composants.

📝 Points essentiels

• Les techniques immuno-enzymatiques phase hétérogène sont très sensibles, permettant de détecter des quantités très faibles d’Ag ou d’Ac (de 10^-9 à 10^-12 g).
• La fixation sur support solide facilite la séparation des complexes immunologiques non spécifiques, augmentant la spécificité.
• La détection repose sur une réaction enzymatique produisant un signal coloré ou fluorescent, mesurable par spectrophotométrie.
• La méthode ELISA est la plus courante, avec ses variantes : sandwich (double anticorps) et indirecte.
• La sensibilité et la spécificité dépendent du choix des anticorps, du support, et du substrat enzymatique utilisé.
• La technique peut être adaptée pour le diagnostic de maladies infectieuses, la recherche biomédicale, ou le dosage de médicaments.

💡 À retenir

Les techniques immuno-enzymatiques phase hétérogène, notamment l’ELISA, offrent une détection précise et sensible d’antigènes ou d’anticorps, essentielles en diagnostic médical et en recherche biomédicale. Leur principe repose sur la fixation spécifique sur support solide, suivie d’une réaction enzymatique mesurable.

📊 Tableaux de Synthèse

Technique	Principe	Utilisation principale	Détection	Spécificité	Sensibilité
Agglutination	Liaison anticorps-antigène entraînant agrégation visible	Diagnostic microbiologique, sérologie	Agrégats visibles	Très spécifique	Moyenne à élevée
Test de Coombs direct	Détection d’anticorps ou complément fixés sur globules rouges	Hémolyses auto-immunes	Agglutination après antiglobuline	Très spécifique	Haute
Test de Coombs indirect	Détection d’anticorps libres dans sérum	Incompatibilités transfusionnelles	Agglutination après antiglobuline	Très spécifique	Haute
Neutralisation d’activités biologiques	Anticorps bloquant activité spécifique	Détection agents pathogènes ou toxines	Absence d’effet biologique	Spécifique à l’agent	Variable
Fixation du complément	Complément fixé sur complexe antigène-anticorps	Diagnostiques auto-immunes, infections	Lyse cellulaire ou détection du complément	Très spécifique	Haute

⚠️ Pièges & Confusions Fréquentes

1. Confondre agglutination directe et indirecte : la directe implique antigènes et anticorps présents dans l’échantillon, l’indirecte utilise des particules recouvertes d’anticorps ou antigènes.
2. Prendre à tort la réaction de Coombs indirecte pour une agglutination simple ; elle nécessite l’ajout d’antiglobuline.
3. Confusion entre neutralisation d’activité (inhibition) et agglutination ; la neutralisation ne produit pas forcément d’agrégats visibles.
4. Oublier que la fixation du complément nécessite des conditions spécifiques (pH, ionicité) pour être efficace.
5. Négliger la sensibilité variable selon la concentration en anticorps ou antigènes, pouvant entraîner des faux négatifs.
6. Confondre la réaction de fixation du complément avec la réaction de lyse directe ; la fixation ne provoque pas toujours la lyse visible.
7. Sous-estimer l’importance des contrôles négatifs et positifs pour éviter les faux résultats.

✅ Checklist Examen

• Expliquer la différence entre agglutination directe et indirecte.
• Décrire le principe du test de Coombs direct et ses applications.
• Identifier les situations où la neutralisation d’activités biologiques est utilisée.
• Indiquer comment la fixation du complément est exploitée dans un diagnostic.
• Différencier les techniques d’antigènes et d’anticorps marqués.
• Expliquer le principe de l’immunofluorescence et ses avantages.
• Décrire les techniques radio-immunologiques et leur utilité.
• Résumer le fonctionnement des techniques immuno-enzymatiques.
• Distinguer la phase homogène de la phase hétérogène dans les techniques immuno-enzymatiques.
• Citer les principales applications des techniques immuno-enzymatiques phase homogène.
• Citer les principales applications des techniques immuno-enzymatiques phase hétérogène.
• Vérifier la maîtrise du vocabulaire spécifique : antigène, anticorps, agglutination, fixation du complément, neutralisation.